①將培養(yǎng)液倒至1.5 ml 離心管中，于2500 rpm 離心5 min。

 

②棄上清，加入4 ml PBS并用槍輕輕吹打洗滌，然后2500 rpm 離心5 min 。棄上清后用PBS重復洗滌一次。

 

③用槍洗干上清后，加100 μl 裂解液（含PMSF）冰上裂解30 min，裂解過程中要經常彈一彈以使細胞充分裂解。

 

④將裂解液與培養(yǎng)瓶中裂解液混在一起4℃、12000 rpm 離心5 min，取上清分裝于0.5 ml 離心管中并置于-20℃保存。

 

2. 蛋白含量的測定

 

（1）制作標準曲線

 

①從-20℃取出1 mg/ml BSA，室溫融化后，備用。

 

②取18個1.5 ml 離心管，3個一組，分別標記為 0 μg，2.5 μg，5.0 μg ，10.0 μg ，20.0 μg ，40.0μg。

 

③按下表在各管中加入各種試劑。

 

0 μg 2.5 μg 5.0 μg 10.0 μg 20.0 μg 40.0 μg

1mg/ml BSA —— 2.5 μl 5.0 μl 10.0 μl 20.0 μl 40.0 μl

0.15mol/L NaCl 100 μl 97.5 μl 95.0 μl 90.0 μl 80.0 μl 60.0 μl

G250考馬斯亮藍溶液 1 ml 1 ml 1 ml 1 ml 1 ml 1 ml

 

④混勻后，室溫放置2 min 。在生物分光光度計（Bio－Photometer，Eppentoff）上比色分析。

 

（2）檢測樣品蛋白含量

 

①取足量的1.5 ml 離心管，每管加入4℃儲存的考馬斯亮藍溶液1 ml 。室溫放置30 min后即可用于測蛋白。

 

②取一管考馬斯亮藍加0.15 mol/L NaCl溶液100 μl，混勻放置2分鐘可做為空白樣品，將空白倒入比色杯中在做好標準曲線的程序下按blank測空白樣品。

 

③棄空白樣品，用無水乙醇清洗比色杯2次（每次0.5 ml），再用無菌水洗一次。

 

④取一管考馬斯亮藍加95 μl 0.15 mol/L NaCl NaCl溶液和5 μl待測蛋白樣品，混勻后靜置2 min，倒入扣干的比色杯中按sample鍵測樣品。

 

注意：每測一個樣品都要將比色杯用無水乙醇洗2次，無菌水洗一次?？赏瑫r混合好多個樣品再一起測，這樣對測定大量的蛋白樣品可節(jié)省很多時間。測得的結果是5 μl樣品含的蛋白量。

 

3. SDS－PAGE電泳

 

（1）清洗玻璃板：

 

一只手扣緊玻璃板，另一只手蘸點洗衣粉輕輕擦洗。兩面都擦洗過后用自來水沖，再用蒸餾水沖洗干凈后立在筐里晾干。

 

（2）灌膠與上樣

 

①玻璃板對齊后放入夾中卡緊。然后垂直卡在架子上準備灌膠。（操作時要使兩玻璃對齊，以免漏膠。）

 

②按前面方法配10%分離膠，加入TEMED后立即搖勻即可灌膠。灌膠時，可用10 ml 槍吸取5 ml 膠沿玻璃放出，待膠面升到綠帶中間線高度時即可。然后膠上加一層水，液封后的膠凝的更快。（灌膠時開始可快一些，膠面快到所需高度時要放慢速度。操作時膠一定要沿玻璃板流下，這樣膠中才不會有氣泡。加水液封時要很慢，否則膠會被沖變型。）

 

③當水和膠之間有一條折射線時，說明膠已凝了。再等3 min 使膠充分凝固就可倒去膠上層水并用吸水紙將水吸干。

 

④按前面方法配4%的濃縮膠,加入TEMED后立即搖勻即可灌膠。將剩余空間灌滿濃縮膠然后將梳子插入濃縮膠中。灌膠時也要使膠沿玻璃板流下以免膠中有氣泡產生。插梳子時要使梳子保持水平。由于膠凝固時體積會收縮減小，從而使加樣孔的上樣體積減小，所以在濃縮膠凝固的過程中要經常在兩邊補膠。待到濃縮膠凝固后，兩手分別捏住梳子的兩邊豎直向上輕輕將其拔出。

 

⑤用水沖洗一下濃縮膠，將其放入電泳槽中。（小玻璃板面向內，大玻璃板面向外。若只跑一塊膠，那槽另一邊要墊一塊塑料板且有字的一面面向外。）

 

⑥測完蛋白含量后，計算含50 μg蛋白的溶液體積即為上樣量。取出上樣樣品至0.5 ml 離心管中，加入5×SDS 上樣緩沖液至終濃度為1×。（上樣總體積一般不超過15 μl，加樣孔的最大限度可加20 μl樣品。）上樣前要將樣品于沸水中煮5 min使蛋白變性。

 

⑦加足夠的電泳液后開始準備上樣。（電泳液至少要漫過內測的小玻璃板。）用微量進樣器貼壁吸取樣品，將樣品吸出不要吸進氣泡。將加樣器針頭插至加樣孔中緩慢加入樣品。（加樣太快可使樣品沖出加樣孔，若有氣泡也可能使樣品溢出。加入下一個樣品時，進樣器需在外槽電泳緩沖液中洗滌3次，以免交叉污染。

 

（3）電泳

電泳時間一般4～5 h，電壓為40 V較好，也可用60 V。電泳至溴酚蘭剛跑出即可終止電泳，進行轉膜。

 

4. 轉膜

 

（1）轉一張膜需準備6張7.0～8.3 cm的濾紙和1張7.3～8.6 cm的硝酸纖維素膜。切濾紙和膜時一定要戴手套，因為手上的蛋白會污染膜。將切好的硝酸纖維素膜置于水上浸2 h才可使用。（用鑷子捏住膜的一邊輕輕置于有超純水的平皿里，要使膜浮于水上，只有下層才與水接觸。這樣由于毛細管作用可使整個膜浸濕。若膜沉入水里，膜與水之間形成一層空氣膜，這樣會阻止膜吸水。

 

（2）在加有轉移液的搪瓷盤里放入轉膜用的夾子、兩塊海綿墊、一支玻棒、濾紙和浸過的膜。

 

（3）將夾子打開使黑的一面保持水平。在上面墊一張海綿墊，用玻棒來回搟幾遍以搟走里面的氣泡。（一手搟另一手要壓住墊子使其不能隨便移動。）在墊子上墊三層濾紙（可三張紙先疊在一起在墊于墊子上），

一手固定濾紙一手用玻棒搟去其中的氣泡。

 

（4）要先將玻璃板撬掉才可剝膠，撬的時候動作要輕，要在兩個邊上輕輕的反復撬。撬一會兒玻璃板便開始松動，直到撬去玻板。（撬時一定要小心，玻板很易裂。）除去小玻璃板后，將濃縮膠輕輕刮去（濃縮膠影響操作），要避免把分離膠刮破。小心剝下分離膠蓋于濾紙上，用手調整使其與濾紙對齊，輕輕用玻棒搟去氣泡。將膜蓋于膠上，要蓋滿整個膠（膜蓋下后不可再移動）并除氣泡。在膜上蓋3張濾紙并除去氣泡。最后蓋上另一個海綿墊，搟幾下就可合起夾子。整個操作在轉移液中進行，要不斷的搟去氣泡。膜兩邊的濾紙不能相互接觸，接觸后會發(fā)生短路。（轉移液含甲醇，操作時要戴手套，實驗室要開門以使空氣流通。）

 

（5）將夾子放入轉移槽槽中，要使夾的黑面對槽的黑面，夾的白面對槽的紅面。電轉移時會產熱，在槽的一邊放一塊冰來降溫。一般用60 V轉移2 h或40 V轉移3 h。

 

（6）轉完后將膜用1×麗春紅染液染5 min（于脫色搖床上搖）。然后用水沖洗掉沒染上的染液就可看到膜上的蛋白。 將膜晾干備用。   

 

5. 免疫反應

 

（1）將膜用TBS從下向上浸濕后，移至含有封閉液的平皿中，室溫下脫色搖床上搖動封閉1h。

 

（2）將一抗用TBST稀釋至適當濃度（在1.5 ml 離心管中）；撕下適當大小的一塊兒保鮮膜鋪于實驗臺面上，四角用水浸濕以使保鮮膜保持平整；將抗體溶液加到保鮮膜上；從封閉液中取出膜，用濾紙吸去殘留液后，將膜蛋白面朝下放于抗體液面上，掀動膜四角以趕出殘留氣泡；室溫下孵育1～2 h后，用TBST在室溫下脫色搖床上洗兩次，每次10 min；再用TBS洗一次，10 min。

 

（3）同上方法準備二抗稀釋液并與膜接觸，室溫下孵育1～2 h后，用TBST在室溫下脫色搖床上洗兩次，每次10 min；再用TBS洗一次，10 min，進行化學發(fā)光反應。

 

6. 化學發(fā)光，顯影，定影

 

（1）將A和B兩種試劑在保鮮膜上等體積混合；1 min后，將膜蛋白面朝下與此混合液充分接觸；1 min后，將膜移至另一保鮮膜上，去盡殘液，包好，放入X-光片夾中。

 

（2）在暗室中，將1×顯影液和定影液分別到入塑料盤中；在紅燈下取出X－光片，用切紙刀剪裁適當大?。ū饶さ拈L和寬均需大1 cm）；打開X-光片夾，把X－光片放在膜上，一旦放上，便不能移動，關上X-光片夾，開始計時；根據(jù)信號的強弱適當調整曝光時間，一般為1 min或5 min，也可選擇不同時間多次壓片，以達最佳效果；曝光完成后，打開X-光片夾，取出X-光片，迅速浸入顯影液中顯影，待出現(xiàn)明顯條帶后，即刻終止顯影。顯影時間一般為1～2 min（20～25℃），溫度過低時（低于16℃）需適當延長顯影時間；顯影結束后，馬上把X-光片浸入定影液中，定影時間一般為5～10 min，以膠片透明為止；用自來水沖去殘留的定影液后，室溫下晾干。

 

應注意的是：顯影和定影需移動膠片時，盡量拿膠片一角，手指甲不要劃傷膠片，否則會對結果產生影響。

 

7. 凝膠圖象分析

將膠片進行掃描或拍照，用凝膠圖象處理系統(tǒng)分析目標帶的分子量和凈光密度值。